СРЕДСТВО ЗА УБЛАЖАВАЊЕ КАРИЈЕСА: ОБРАЗЛОЖЕЊЕ, ПРИПРЕМА И УПОТРЕБА - БИОЛОГИЈА - 2025

Просечна Цари Блаир је получврстог агар, користе за транспорт и очување биолошких узорака који носе цревну патогене, микроорганизмима и анаеробни лабилне. Као и сва превозна средства, његова функција је да држи узорак у оптималним условима све док га не узгаја. Присутни патогени микроорганизми, као и пратећа микробиота, морају остати одрживи, али без повећања њихове популације.

Цари Блаир Медиум резултат је промене формулације Стуарт транспортног медијума. Модификација је извршена 1964. године и састојала се од замене система за регулисање пХ (глицерофосфат) фосфатним неорганским пуфером.

А. Цултуретте са Цари Блаир Медиум Б. Колекционари столица са Цари Блаир Медиум. Извор: А. Видео Меганхов, набавите културу рана 2011 иоутубе.цом Б. Корисник: Маттес

Преформулисање је било неопходно јер су њени творци схватили да глицерофосфат након одређеног времена може метаболизирати неке сапрофитне бактерије. Оне се умножавају преклапајући присутне патогене.

Остале промене биле су елиминација метилен плаве боје, као и подешавање пХ према алкалности (пХ 8.4). Све ове промене побољшале су ефикасност превозних средстава.

Првобитно је средство Цари Блаир коришћено за одржавање цревних патогена, као што су Схигелла флекнери, Салмонелла сп, Вибрио цхолерае и Цампилобацтер сп.

Ипак, ефикасност у очувању одрживости захтевних и лабилних патогена, као што су: Неиссериа гоноррхоеае, Хаемопхилус инфлуензае, Неиссериа менингитидис, Бордетелла пертуссис, Стрептоцоццус пнеумониае и неки анаероби, касније је примећена.

Основе

Средство Цари Блаир садржи натријум хлорид, натријум тиогликолат, динатријум фосфат, калцијум хлорид и агар.

Натријум-хлорид одржава осмотску равнотежу медијума, динатријум-фосфат и калцијум хлорид уравнотежују пХ. Са своје стране, натријум тиогликолат одржава низак оксидациони редукциони потенцијал, док мали део агара даје получврсте конзистенције.

Медијум Цари Блаир не садржи хранљиве материје, јер је функција транспортног медијума да држи узорак без њега, а да пролази кроз промене у смислу влаге и оптерећења микроба; то јест, избегава се дехидратација узорка уз очување одрживости и количине присутних микроорганизама.

Коначно, благо алкални пХ спречава смрт микроорганизама услед киселости, нарочито Вибриоси су веома осетљиви на киселине.

Припрема

Медијум Цари Блаир комерцијално је доступан као посебан уређај за употребу. Транспортни систем је покривен пластичном кесом Пеел Пацк. У унутрашњости се налази брис за сакупљање узорка и посуда за посуду за полутврди медијум Цари Блаир.

Такође на тржишту постоје комерцијалне куће које у лабораторији испоручују дехидрирани медијум за његову припрему.

Да бисте то учинили, изважите 13,2 г дехидрираног медијума и растворите га у литру дестиловане воде. Загрејати и мућкати препарат док се потпуно не отопи. Поделите медијум у епрувете са навојним затварачима (бакелит).

Пирјајте епрувете 15 минута. Оставите да се охлади и држите на собној температури до употребе.

Унинокулирани медијум Цари Блаир може се оптимално чувати до 18 месеци на собној температури.

ПХ медијума мора да се подеси на 8,4 ± 0,2. Боја припремљеног медијума је беж, са одређеном опалесценцијом.

Употреба

Врста узорака

Цари Блаир Медиум се користи када се узорци столице, ректални брис и вагинални брис не могу одмах обрадити.

Када не постоји превозно средство, узорци се могу чувати на -70 ° Ц.

Узимање узорка

Брис је импрегниран узорком и убачен је у медијум Цари Блаир, а да не досегне дно.

Идентификација узорка

Медиј Цари Блаир мора имати налепницу на којој су постављени основни подаци, као што су: име и презиме пацијента, идентификациони број узорка, извор узимања узорка, лекар, датум и време узимања. узорак, претпостављена дијагноза, лечење антибиотицима.

Трансфер

Чврсто покривено и транспортовано на собној температури у случају фекалних узорака. Док се за вагиналне узорке у потрази за анаеробним микроорганизмима препоручује преношење узорака на 4 ° Ц.

У свим случајевима, препоручено време преноса је 4-6 сати, а максимално 24 сата.

Ако се сумња на присуство Цампилобацтер јејуни у узорцима столице и они се не могу прерадити у року од 24 сата, препоручује се чување у медију Цари Блаир на 4 ° Ц.

Истраге проведене на превозном средству Цари Блаир

Неколико студија је показало да медијум Цари Блаир може остати одржив за ентеропатогене микроорганизме рода Схигелла и Салмонелла чак 49 дана након узимања узорка.

Са своје стране, Вибрио колера, други важан цревни патоген, може да преживи 22 дана, док се Иерсиниа пестис (узрочник бубонске и пнеумоничне куге) може опоравити после 75 дана.

Међутим, упркос доказаној трајности у погледу опоравка ових микроорганизама, препоручује се што пре узимање узорака у медијуму Цари Блаир у лабораторију.

Исто тако, једном када узорак стигне у лабораторију, мора се одмах одсејати у одговарајућу подлогу за културу.

С друге стране, Цари Блаир медијум, осим што је користан за транспорт факултативних микроорганизама, такође се препоручује за узорке који садрже анаеробне патогене.

У том смислу, ДеМарцо и остали, 2017. спровели су студију под називом: Опстанак вагиналних микроорганизама у три комерцијално доступна транспортна система.

Они су показали да је Цари Блаир Транспорт Медиум најбољи транспортни медиј за очување и опоравак вагиналних анаеробних микроорганизама. Исто тако, показали су да је највећа стопа опоравка постигнута када је температура преноса била 4 ° Ц.

Стога се закључује да температура транспорта вагиналних бриса (анаеробни микроорганизми) треба да буде 4 ° Ц. Док је за узорке фекалија у потрази за факултативним микроорганизмима, идеална температура је собна температура.

КА

Да би се проценила контрола квалитета транспортног медијума Цари Блаир, сојеви познати као Схигелла соннеи АТЦЦ 11060, Салмонелла цхолераесуис АТЦЦ 14028, Вибрио цхолерае и Цампилобацтер сп.

Медијум се инокулира са одабраним сојем и држи се на собној температури 24 сата. Затим се посеју у одговарајуће медије за културу. У свим случајевима се очекује задовољавајући опоравак дотичног микроорганизма.

Референце

1. ДеМарцо АЛ, Рабе ЛК, Аустин МН и др. Преживљавање вагиналних микроорганизама у три комерцијално доступна транспортна система. Анаеробе. 2017; 45: 44–49.
2. Васфи М, Оиофо Б, Елгинди А, Цхурилла А. Поређење медијума за чување за чување узорака столице. Ј Цлин Мицробиол. деветнаест деведесет пет; 33 (8): 2176–2178.
3. Дан М, Рицхардсон Ј, др Милиотис, Коорнхоф ХЈ. Поређење средстава за чување и услова замрзавања за чување узорака фекалија. Ј Мед Мицробиол. 1989; 28 (2): 151-4.
4. Конеман Е, Аллен С, Јанда В, Сцхрецкенбергер П, Винн В. (2004). Микробиолошка дијагноза. 5. изд. Редакција Панамерицана СА Аргентина.
5. Форбес Б, Сахм Д, Веиссфелд А. (2009). Баилеи & Сцотт Микробиолошка дијагноза. 12 ед. Редакција Панамерицана СА Аргентина.
6. Цонда Пронадиса Лабораториес. Халф Цари Блаир. Доступно на: цондалаб.цом
7. Метрик Лаборатори. Цари Блаир. Доступно на: метриклаб.мк